- 试剂:ABW® Matrigengel (REF: 082775);ROCK 抑制剂(Y-27632);DMEM F12/DMEM;mTeSR1/E8 培养基;Accutase 解离剂;PBS (D-PBS)
- 耗材:无菌枪头;六孔板;无菌 EP 管
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材料预冷:
a. 将 ABW® Matrigengel 置于冰盒中,放入 4℃冰箱,使胶能过缓慢融化;
b. 4℃预冷无菌离心管、无菌枪头、六孔板、DMEM F12/DMEM;
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将 ABW® Matrigengel (REF: 082775) 以 1:80 或 1: 100 比例进行稀释:
a. 将适量 4℃的 DMEM F12/DMEM 移入冷却的 15/50 mL EP 中;
b. 使用移液器将预冷的枪头从 EP 管吸取 DMEM F12/DMEM 中移入分装好的 ABW® Matrigengel,再吸取转移至 EP 管内;重复几次,直到基质胶完全移入到 EP 管中;
c. 按比例混合后作为铺基基质胶混合液,进行后续铺板;
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制作基质胶涂层:
a. 按 1mL / 孔将基质胶混合液加入预冷的六孔板中,轻轻晃动以确保混合液均匀铺在板上;
b. 将 6 孔板转移到 37℃孵育过夜(板材可以在孵育四小时后即可使用,但过夜孵育的涂层对细胞培养效果更佳);
c. 使用前吸去涂层上方液体;
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配置 ROCK 抑制剂(Y-27632)工作液:使用无菌 PBS 将 Y-27632 溶解,配置成 10mM 溶液(1000X),工作浓度为 10μM;
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配置含 ROCK 抑制剂 mTeSR1/E8 培养基:将 10mM 溶液加入 mTeSR1/E8 培养基至终浓度为 10μM。
注意:ABW®Matrigengel 在 - 4℃时会逐渐聚合成胶,请严格把控操作温度,控制操作时间;稀释后的基质胶混合液同样需要冰上操作。
- 复苏 iPSC:
a. 从液氮罐或干冰中取出 ipsc,37℃水浴中解冻,解冻应迅速完成;
b. 用 75% 酒精消毒冻存管后转移到超净台 / 生物安全柜;
c. 将细胞溶液转移到新的 15ml EP 管中,用 DMEM F12/DMEM 冲洗冻存管两次;
d. 室温 300g 离心 5min (ipsc 对于 200-300g 的转速都有较好的耐受性,建议使用 300g 来最大限度捕捉细胞,标准程序下建议使用 200g);
e. 弃上清,用 2mL 含有 ROCK 抑制剂的培养基轻轻地重悬 iPSC 后转移到用新铺好的孔中,前后摆动使得细胞均匀分布(建议将每瓶细胞 1*10^6 装在六孔板的一个孔内使细胞存活率最大化);
f. 将六孔板放回 37℃培养箱。(请在细胞被转移后立即执行,避免细胞中央密度增加);
g. 次日撤去 ROCK 抑制剂,即用无抑制剂的培养基替代含抑制剂的培养基培养细胞。
注意:细胞培养过程中不提倡使用抗生素,其会干扰细胞其未分化潜能;培养环境应与其他细胞隔离,两次传代后检测支原体;DMSO 在室温下对细胞有毒,复苏步骤应快速完成。
- iPSC 传代:
a. 将培养上清吸去,用 1mL 的 PBS 清洗后加入 1mL Accutase;
b. 转移到 37℃培养 3 分钟,或在显微镜下观察到大部分细胞脱落(若细胞仍然附着,可将培养板放在手上,另一手轻轻在你的手上拍打使板发生轻微震动从而使细胞脱落);
c. 传代前准备好基质胶涂布的六孔板;
d. 倾斜培养板,将 Accutase 溶液沿培养层表面转移两次,分离色块并转移到离心管中;
e. 用 DMEM F12/DMEM 冲洗培养层表面,并与管中的细胞溶液合并(使用 DMEM/F12 或用 PBS 洗涤,建议使用至少 5% 的培养基,有利于随后的洗涤和附着);
f. 室温下 300g 离心五分钟;
g. 吸去上清,用含有 ROCK 抑制剂的培养基进行重悬;
h. 将细胞加入到涂层板中,轻轻摇动使细胞分布均匀;
i. 将培养板放入 37℃培养箱中孵育。
注意:iPSC 生长为单层后则会迅速分化并死亡,为了保持生长和多能性,需在其长满前进行传代。
- iPSC 细胞冻存:
a. 准备细胞和解离液,在解离液解离细胞过程中,将培养基与 10% DMSO 混合,在冻存管上贴好标签,配置好冻存液(可选 20% 血清或血清替代物提高存活率,也可以使用 90% 胎牛血清 + 10% DMSO);
b. 分离细胞方法同传代,可以使用细胞计数器来配合进行细胞的冻存;
c. 以 1×10^6 冻存每管细胞,之后进行离心、抽吸培养基,然后在适当体积的冻存液中进行重悬;
d. 将 1ml 重悬好的细胞冻存液加到 1.5ml 冻存管中,并进行程序性降温,在液氮罐中长期保存。